ЗМІНИ ВМІСТУ БІОЛОГІЧНО АКТИВНИХ СПОЛУК БЕБІ-ШПИНАТУ ПІД ЧАС ЗБЕРІГАННЯ

  • O. П. Прісс Таврійський державний агротехнологічний університет імені Дмитра Моторного https://orcid.org/0000-0002-6395-4202
  • О. І. Яковер Таврійський державний агротехнологічний університет імені Дмитра Моторного https://orcid.org/0009-0008-5588-7346
  • Т. І. Колісниченко Таврійський державний агротехнологічний університет імені Дмитра Моторного https://orcid.org/0000-0003-0560-9520
  • П. О. Булгаков Таврійський державний агротехнологічний університет імені Дмитра Моторного https://orcid.org/0009-0002-9011-8151
Ключові слова: бебі-шпинат, хітозан, рутин, фенольні сполуки, хлорофіли, аскорбінова кислота, зберігання, біополімери, антиоксиданти

Анотація

Досліджено зміни вмісту біологічно активних сполук бебі-шпинату (Spinacia oleracea L.) під час зберігання в живильному середовищі на основі хітозану та рутину порівняно з контролем. Зберігали сорти шпинату Траверс, Такома, Трейлбос за температури 7 ± 0,5 °C та відносної вологості повітря вологості 95 ± 3 %. Оцінювали сухі речовини, аскорбінову кислоту, суму хлорофілів (a + b) та фенольних сполук. Установлено, що застосування живильного середовища істотно сповільнює деградацію компонентів: через 6 діб втрати фенолів скоротилися щонайменше вдвічі, хлорофілів у 2–6 разів менші, а збереження вітаміну С було на 20–30 % вищим. Після 12 діб зберігання збережено 65–80 % початкового рівня хлорофілів та понад 80 % аскорбінової кислоти (залежно від сорту). Запропонований підхід подовжує період свіжості бебі-шпинату та підтримує його біохімічний склад.

Посилання

1. Fan D., Kandasamy S., Hodges D. M., Critchley A. T., & Prithiviraj B. Pre-harvest treatment of spinach with Ascophyllum nodosum extract improves post-harvest storage and quality. Scientia Horticulturae. 2014. 170. P. 70–74. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2014.02.038
2. Zhu S., Jin L., Zhang Y., Chen F., Farouk A., Yang T., Yi G., Li H., Ban Z. J., & Liu L. Enhancing fresh-cut spinach preservation with carbon quantum dot-based composite coatings. Scientific Reports. 2025. 15(1). P. 1–12. https://doi.org/10.1038/s41598-025-07882-x
3. Huda-Faujan N., Zubairi S. I., & Baker A. A. A. Nutritional and bioactive constituents of antioxidant and antimicrobial properties in Spinacia oleracea: A review. Sains Malaysiana. 2023. 52(9). P. 2571–2585. https://doi.org/ 10.17576/JSM-2023-5209-08
4. Garrido Y., Tudela J. A., Hernández J. A., & Gil M. I. Modified atmosphere generated during storage under light conditions is the main factor responsible for the quality changes of baby spinach. Postharvest Biology and Technology. 2016. 114. P. 45–53. https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2015.12.001
5. Pandrangi S., LaBorde L. F. Retention of folate, carotenoids, and other quality characteristics in commercially packaged fresh spinach. Journal of Food Science. 2004. 69(9). https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2004.tb09919.x
6. Akan S. Effects of storage temperature and packaging on physiological and nutritional quality preservation of minimally processed spinach. Journal of Agricultural Science and Technology. 2022. 24(3). P. 679–691.
7. Caleb O. J., Mahajan P. V., Al-Said F. A.-J., & Opara U. L. Modified atmosphere packaging technology of fresh and fresh-cut produce and the microbial consequences – a review. Food and Bioprocess Technology. 2013. 6(2). P. 303–329. https://doi.org/10.1007/s11947-012-0932-4
8. Czerwiński K., Rydzkowski T., Wróblewska-Krepsztul J., & Thakur V. K. Towards impact of modified atmosphere packaging (MAP) on shelf-life of polymer-film-packed food products: challenges and sustainable developments. Coatings. 2021. 11(12). https://doi.org/10.3390/coatings11121504
9. Ncube L. K., Ude A. U., Ogunmuyiwa E. N., Zulkifli R., & Beas I. N. Environmental impact of food packaging materials: a review of contemporary development from conventional plastics to polylactic acid-based materials. Materials (Basel). 2020. 13(21). https://doi.org/10.3390/ma13214994
10. Wang M., Xu J., Ding Z., & Xie J. Prolong the postharvest shelf life of spinach through the antioxidative ability of melatonin. Food Chemistry: X. 2023. 19. 100769. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2023.100769
11. Priss O. P., & Kulik A. S. Color stabilization of green vegetables at storage. Eastern-European Journal of Enterprise Technologies. 2014. 4(10(70)). P. 53. https://doi.org/10.15587/1729-4061.2014.26231
12. Прісс О. П., Улянич О. І., Шевчук К. М., Яковер О. І., & Ваховська А. В. Зберігання зелені шпинату городнього з використанням живильного середовища. Збірник наукових праць Уманського НУС. 2023. 103(1). С. 7–17. https://doi.org/10.32782/2415-8240-2023-103-1-7-17
13. Priss O., Hutsol T., Glowacki S., Bulhakov P., Bakhlukova K., Osokina N., Nurek T., Horetska I., & Mykhailova L. Effect of asparagus chitosan-rutin coating on losses and waste reduction during storage. Agricultural Engineering. 2024. 28(1). P. 99–118. https://doi.org/10.2478/agriceng-2024-0008
14. Yang J., Shen M., Luo Y., Wu T., Chen X., Wang Y., & Xie J. Advanced applications of chitosan-based hydrogels: from biosensors to intelligent food packaging system. Trends in Food Science and Technology. 2021. 110. P. 822–832. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2021.02.032
15. Бондаренко Г. Л., Яковенко К. І. Методика дослідної справи в овочівництві і баштанництві. Харків : Основа, 2001. 369 с.
16. Сердюк М. Є., Прісс О. П., Гапріндашвілі Н. А., Здоровцева Л. М., Сухаренко О. І., Іванова І. Є. Дослідницький практикум. Частина 1. Методи дослідження плодоовочевої та ягідної продукції. Люкс, 2020. 307 с.
17. Gęgotek A., Jarocka-Karpowicz I., & Skrzydlewska E. Synergistic cytoprotective effects of rutin and ascorbic acid on the proteomic profile of 3D-cultured keratinocytes exposed to UVA or UVB radiation. Nutrients. 2019. 11(11). https://doi.org/10.3390/nu11112672
18. Wang J., Yuan Y., Liu Y., Li X., & Wu S. Application of chitosan in fruit preservation: a review. Food Chemistry: X. 2024. 23. 101589. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2024.101589
19. Maslov O. Y., Komisarenko M. A., Kolisnyk S. V., & Golik M. Y. Investigation of antioxidant interaction between ascorbic acid and rutin in medicine “Ascorutin.” Current Issues in Pharmacy and Medicine: Science and Practice. 2024. 17(1). P. 17–20. https://doi.org/10.14739/2409-2932.2024.1.295418
20. Meitha K., Pramesti Y., Signorelli S., & Kriswantoro J. A. Postharvest chitosan application maintains the quality of spinach through suppression of bacterial growth and elicitation. Horticulture, Environment and Biotechnology. 2022. 63(2). P. 217–227. https://doi.org/10.1007/s13580-021-00397-0
21. Lopez-Polo J., Soto A., Zamorano M., Silva-Weiss A., Oyarzun-Ampuero F. A., Brossard N., Fuentes J., & Osorio F. A. Effect of the incorporation of liposomes loaded with rutin on the transport properties of edible film produced with hydroxypropyl methylcellulose: an in vitro release study. LWT. 2024. 191. 115583. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2023.115583
22. Feng K., Feng X., Tan W., Zheng Q., Zhong W., Liao C., Liu Y., Li S., & Hu W. Development of a food preservative from sea buckthorn together with chitosan: application in and characterization of fresh-cut lettuce storage. Frontiers in Microbiology. 2023. 14. 1080365. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1080365
23. Manzoor M. F., Waseem M., Javed M. R., Saleem M., Khalil A. A., Althawab S. A., Ahmed I. A. M., & Zeng X.-A. Unlocking spinach polyphenols: novel extraction, impact of processing, value-addition and therapeutic potentials. Food Reviews International. 2025. P. 1–38. https://doi.org/10.1080/87559129.2025.2562437
Опубліковано
2025-12-22
Як цитувати
ПріссO. П., Яковер, О. І., Колісниченко, Т. І., & Булгаков, П. О. (2025). ЗМІНИ ВМІСТУ БІОЛОГІЧНО АКТИВНИХ СПОЛУК БЕБІ-ШПИНАТУ ПІД ЧАС ЗБЕРІГАННЯ. Науковий вісник Таврійського державного агротехнологічного університету, 15(2), 326-333. https://doi.org/10.32782/2220-8674-2025-15-2-41